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DNA sequencing을 통한 유전자분석

Title : Genomic DNA extraction, PCR, DNA sequencing을 통한 유전자 분석introduction :이번 실험에서는 Genomic DNA extraction을 통해 genomic DNA를 얻고 PCR을 통해 원하는 gene만 증폭시킨다. 그 다음 electrophoresis, purification, sequencing을 거쳐 맞는 size의 band가 나왔는지 확인하고 sequencing을 해 얻어진 DNA 서열로 NCBI에서 gene의 이름과 위치를 찾는 것이 이번 실험의 목표이다.먼저 DNA extraction의 원리는 cell membrane과 nuclear membrane을 lysis한 후 DNA를 산성화시켜 한 가닥으로 만드는 것이다. 그 다음 DNA에 부착된 histone과 같은 단백질들을 분리하고 단일가닥을 다시 이중가닥으로 결합시킨 후 DNA만 정제해 내는 것이다.quantification의 원리는 단백질과 염기의 자외선 흡수 spectrum이 다르다는 것을 이용한 것이다. nucleotide의 base 부분은 공명구조 때문에 260nm의 빛을 강하게 흡수하고 단백질은 280nm의 빛을 강하게 흡수하기 때문에 각각의 빛에서의 흡광도를 측정하여 A260/A280을 계산하면 DNA의 purity를 알 수 있는 것이다. 일반적으로 A260/A280이 1.8~2의 값을 가질 때 pure하다고 본다.이렇게 얻어진 genomic DNA 중 원하는 부분의 DNA 만을 증폭하고 싶을 때 이용하는 방법이 PCR이다. 증폭하고자 하는 특정 유전자의 끝 부분에 상보적인 primer를 사용함으로써 원하는 gene만을 증폭시킬 수 있다. PCR sample을 만들 때 primer forward와 primer reverse가 증폭될 범위를 잡아주는 기능을 하고 Taq polymerase는 높은 온도에서도 변형되지 않고 DNA를 복제해주며 dNTP는 복제에 쓰이는 원료가 된다.PCR은 pre-denaturation, denaturatiDNA를 합성할 수 있게 해준다. 이러한 denaturation, annealing, extension 과정을 30cycle 정도 반복하여 DNA를 증폭시킨 뒤 post-extension단계에서 72℃를 5분 간 가해 나머지 extension이 덜 된 것들의 extension이 마저 일어날 수 있게 해준다.electrophoresis는 전하를 띠는 분자가 전기장 내에서 분리되는 방법으로 agarose gel에서 크기가 큰 DNA는 천천히 이동하고 작은 DNA는 빠르게 이동해 크기에 따라 분리되게 해준다. DNA의 이동속도에 영향을 주는 요인으로는 DNA의 크기, agarose의 농도, DNA의 형태, 전압, buffer의 조성 등이 있다. 크기가 작은 DNA가 더 빠르게 이동하며, agarose 농도가 낮을 때 더 빠르게 이동한다. 또한 supercoiled된 DNA가 가장 빠르게 이동하고 그 다음 linear한 DNA가 빠르게, circular한 DNA가 가장 느리게 이동한다. 전압이 높을 때, buffer의 농도가 높을 때도 DNA가 더 빠르게 이동한다.purification은 silica로 coating된 벽이 + charge를 띠어 phosphate에 의해 ? charge를 띠는 DNA만 결합하는 성질을 이용한 것이다. DNA만 선택적으로 column에 결합되고 PCR product의 다른 물질은 washing을 통해 제거되고 최종적으로 elution 과정을 거쳐 column 벽에서 DNA만 얻어내는 것이다.마지막 단계인 sequencing의 방법에는 고전적인 Sanger method가 있고 현재의 대량 sequencing 방법이 있다. Sanger method에서는 ddNTP를 chain terminator로 넣어주어 다양한 길이의 DNA fragment를 얻어 electrophoresis를 통해 sequence를 결정하게 된다. 하지만 현대의 대량 sequencing 방법에서는 각 base를 다른 색의 형광물질로 처리한 4가지의 dNTP를 이용하여 ex시키고 간단히 centrifuge한 다음 ice에 2분 간 박아둔다.⑥ 100ul protein precipitation solution을 넣고 1분간 vortex한 뒤 1분간 centrifuge한다.⑦ pellet을 건드리지 않고 supernatant를 새로운 e-tube로 옮긴다.⑧ 100% isopropanol을 400ul 넣고 mix한 후 1분 간 centrifuge한다.⑨ 70% ethanol 300ul를 넣고 mix한 후 1분 간 centrifuge한다.⑩ centrifuge가 끝나면 최대한 supernatant를 깨끗이 제거한 후 air dry를 하고 4℃에서 incubation시킨다.⑪ UV spectrophotometer를 이용해 260nm/280nm absorbance를 측정해 purity를 본다.① template 1ul, primer forward 1ul, primer reverse 1ul, DW 17ul를 넣어 total 20ul로 volume을 맞춘 뒤 pipetting을 하고 spin down한다.② PCR 기계를 이용해 PCR을 수행한다.① 1% agarose gel에 5ul sample를 loading한다.② 20분간 120V로 electrophoresis한다.③ UV 아래에서 DNA band를 관찰한다.① 15ul PCR product와 75ul binding buffer를 섞는다.② binding column tube에 sample을 넣고 13000rpm으로 1분간 centrifuge한다.③ filtrate를 제거하고 sample을 다시 binding column에 넣는다.④ washing buffer 500ul를 넣고 13000rpm으로 1분간 centrifuge한다.⑤ filtrate를 제거하고 binding column에 다시 넣는다.⑥ 다시 washing buffer 500ul를 넣고 다시 13000rpm으로 1분간 centrifuge한다.⑦ filtrate를 제거하고 sample을 binding column에 넣는한 DNA 농도 및 purity그림 1은 genomic DNA extraction을 한 뒤 얻어진 DNA의 농도와 purity를 측정한 결과이다. 우리 조인 2조의 결과를 보면 DNA의 농도가 103.05ul/ul로 얻어졌다. A260/A280의 비는 1.86으로 얻어졌다. 그리고 A260/A230은 2.23으로 얻어졌다.- Electrophoresis1 2 3 4 5 6 7 8그림 PCR 한 뒤 전기영동 결과그림 2는 우리 조의 PCR 뒤의 전기영동 결과이다. 8개의 lane에서 각각 다른 크기의 band가 뚜렷하게 관찰되었다.- purification그림 sequencing 보내기 전 PCR purification한 농도 및 purityPCR purification 후에 우리 조가 실험한 sample들의 결과를 보면 내가 수행한 3번의 경우 22.35ug/ul의 농도가, A260/A280은 1.8이, A260/A230은 2.1이 얻어졌으며 4번의 경우 29.3ug/ul의 농도가, A260/A280은 1.81이, A260/A230은 1.99가 얻어졌다.- sequencing그림 sequencing 결과sequencing을 맡긴 결과 우리가 PCR한 DNA의 sequence를 알 수 있었다. 하지만 peak가 두 개가 겹치는 경우가 있어 깔끔한 결과가 얻어지지 않았다.- NCBI를 통한 blast1) gene의 이름 : Homo sapiens asparagine-linked glycosylation 9, alpha-1,2-mannosyltransferase homolog (S. cerevisiae) (ALG9)2) gene의 위치 : Chromosome 11NM_001077690 6137 bp3) gene의 기능 : 이 유전자는 alpha-1,2-mannosyltransferase enzyme를 encode한다. 이 enzyme은 lipid-linked oligosaccharide assembly의 기능을 한다. 이 유전자의 mutation은 glycosyla 볼 수 있기 때문에 genomic DNA extraction 결과 pure한 DNA가 얻어졌다고 할 수 있다. A260/A230는 humic acids에 의한 contamination 정도를 보여주는 값으로 2.0~2.2 사이이면 pure하다고 할 수 있는데 이 범위에서 조금 벗어나긴 했지만 미미한 정도라고 판단하였다. 농도도 103.05ug/ul로 다른 조들과 비교해 보았을 때 낮지 않은 결과가 얻어졌다. 이는 genomic DNA extraction 과정에서 DNA의 손실이 많이 일어나지 않고 잘 extraction 되었음을 보여준다고 할 수 있다.그 다음 그림 2의 PCR 한 뒤의 우리 조의 전기영동 결과를 보면 8개의 lane에서 모두 한 개의 band가 나타났음을 볼 수 있었다. 6번의 경우 band가 조금 흐리게 나타나긴 했지만 그래도 분명히 보이는 band가 나타났다. 모든 lane에서 band가 뚜렷이 나타난 것으로 보아 PCR이 잘 수행되었음을 알 수 있었고 band가 하나만 나타난 것으로 보아 원하는 gene의 부분만이 증폭되었음을 알 수 있었다.그리고 내가 직접 PCR한 3번 product size는 325bp이고 다른 것의 product size도 이미 알고 있었다. 5번 product size는 360bp이고 2번 product size는 241bp였는데 실제로 전기영동 결과를 보면 5번 product size보다는 내가 실험한 product size가 더 작아 band가 5번 band보다 더 아래에 위치하였고 2번 product size보다는 커 band가 더 위에 위치함을 볼 수 있었다. marker의 band size를 알았다면 marker의 band와 비교하여 product size를 확인할 수도 있었겠지만 marker의 band size를 알지 못해 marker로부터 직접 product size를 알아낼 수는 없었다.그림 3의 sequencing 보내기 전 PCR purification한 농도 및 purity를 보면 우리 조가 있다.

자연과학| 2013.02.03| 5페이지| 1,500원| 조회(203)

PCR, DNA extraction, DNA sequencing

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protein expression

Title : Fc protein expression과 expression된 Fc protein의 detectionintroduction이번 실험의 목적은 E.coli transformation, IPTG induction, cell lysis, protein purification을 거쳐 우리가 원하는 Fc protein을 순수한 상태로 얻어낸 뒤, SDS PAGE, transfer, western blotting 과정을 거쳐 Fc protein이 제대로 얻어졌는지 확인하는 것이다.Fc protein을 얻기 위해서는 먼저 Fc gene을 가지고 있는 plasmid를 competent cell로 넣어주는 과정인 E.coli transformation을 거쳐야 한다. competent cell이란 정상적인 bacteria에 화학적 처리를 하여 DNA가 잘 들어갈 수 있게 만든 cell이다. 우리가 실험에서 사용하는 cell인 BL21 DE3는 CaCl2 처리가 되어 DNA를 잘 받아들일 수 있는 competent cell이다. Ca2+가 세포벽을 약하게 하는 기능을 해 세포막으로 DNA가 들어가기 쉽다. transformation 시 heat shock을 가하면 competent cell의 membrane potential이 감소하여 cell로의 DNA 유입을 촉진된다.Fc gene 발현을 위해 lac operon을 이용하였다. lac operon의 경우 glucose 농도도 낮고 lactose의 농도가 높은 상태에서는 발현이 되지만 lactose의 농도가 낮은 경우 발현이 되지 않는다. induction시 lactose를 사용하면 lactose가 분해된 후에 원하는 gene이 발현되지 않는다. 따라서 lactose와 비슷한 구조를 가져 induction시킬 수는 있지만 분해되지 않는 IPTG를 이용해 우리가 원하는 Fc gene을 과발현시킨다.발현된 protein을 얻어내려면 cell lysis를 시켜야 하는데 sonication 방법을 사용했다. sonicafer를 통해 protein A bead에 결합한 Fc protein을 elution해내면 Fc protein을 얻을 수 있다.이후에는 protein이 잘 얻어졌는지 확인하는 과정을 거쳐야 한다. SDS-PAGE는 protein을 크기에 따라 분리해주는 방법이다. SDS를 처리하면 단백질에 (-) charge가 일정하게 붙으면서 charge/mass ratio가 동일해지고 단백질의 모양도 linear하게 펴지기 때문에 polyacrylamide gel에서 크기에 따라 분리된다. size marker를 같이 걸어주면 단백질의 size도 확인할 수 있다. 단백질을 크기에 따라 분류하고 나면 nitrocellulose membrane으로 transfer한 뒤 western blotting을 하여 우리가 원하는 protein의 존재 여부를 확인한다.western blotting에서는 Fc protein을 detection하기 위해 human IgG-Fc fragment antibody를 이용한다. 우리가 얻은 protein은 Fc portion을 가지고 있기 때문에 antibody가 이 protein에 결합하게 된다. 그리고 이 antibody에는 peroxidase가 결합되어 있는데 기질인 luminol을 넣어주면 산화되면서 빛을 낸다. 따라서 이 빛을 감지하면 우리가 원하는 단백질의 존재 유무를 알 수 있다. 실험 과정에서 쓰는 물질로는 skim milk가 있는데 이 것을 transfer가 끝난 NC membrane에 먼저 처리함으로써 antibody가 membrane의 빈 곳에 nonspecific하게 binding하는 것을 막고 우리가 얻은 Fc protein에만 결합하게 해준다. TBS-T로 washing해주는 이유도 skim milk를 처리해주었지만 혹시나 존재할 non-specific protein interaction을 줄여 backgroud를 낮춰주기 위한 것이다.procedure① 받은 competent cell을 상온에서 1/3 가량 녹인다. (1natant는 버리고 1ml PBS로 pellet를 resuspend한다.③ 10ul PMSF와 10ul lysozyme을 넣고 30분 간 ice에 incubation한다.④ sonicator로 sonication시켜 cell을 부순다.⑤ 3000g로 15분 간 4℃에서 centrifuge한다. 위에 supernatant에 protein이 존재한다.1단계 : column packing① PBS 300ul를 column에 넣어 적셔준다.② 아래에 CAP을 닫고 column에 protein A 450ul를 채운다. 그 다음 filter를 또 끼운다.2단계 : equilibration 및 sample preparation③ Cap을 열고 binding buffer 500ul를 column을 통해 흘려보낸다. 그 다음 1ml binding buffer를 다시 흘려보낸다.④ 아래 cap을 닫고 binding buffer 1ml를 넣고 lysis한 supernatant 1ml를 넣는다. 그 다음 위에 cap을 닫은 뒤 10회 inverting한다. 아래와 위의 cap을 열고 흘려보내 준다.3단계 : column washing⑤ binding buffer 500ul를 2번 흘려보낸다. 이 때 2번째 wash액을 1.5ml tube에 300ul 받아두고 보관한다.4단계 : elution⑥ elution buffer 1ml를 흘려보내준다. 이 때 300ul씩 2개의 1.5ml tube에 나누어 보관한다.⑦ 전 단계에서 얻은 두 개의 solution에 neutralizing buffer 30ul씩 넣어서 보관한다.1. Sample prep : SDS-PAGE 전에Sample : 26ulLDS sample buffer (4x) : 10ulReducing agent (10x) : 4ulTotal volume : 40ul mix by vortexingHeat sample at 100℃ for 10min boiling2. Comb를 빼고 sticker를 떼어낸다.3. Gel을 전기영동g pad(2장) 순으로 잘 포갠다.④ Transfer buffer가 채워져 있는 chamber에 pad를 넣는다.⑤ 70V로 2hr transfer한다.⑥ ponceau S staining을 하여 transfer가 잘 되었는지 확인한다.① 5% skim milk를 만든다.② NC membrane에 5% skim milk를 넣고 1hr 동안 상온에서 blocking한다.③ incubation이 끝나기 10분 정도 전에, Human IgG-Fc fragment antibody를 skim milk에 1:10000으로 incubation한다.④ antibody와 membrane을 sealing bag에 넣고 상온에서 2hr incubation 하거나, 4℃에서 over-night incubation 한다.⑤ TBS?T로 10분씩 3회 washing 한다.⑥ Peroxide solution과 Luminol Enhancer solution을 1:1로 섞은 후, membrane을 넣으면 발색반응이 일어난다.⑦ 암실에서 develop 혹은 Las로 developing한다.Result그림 1은 SDS-PAGE 이후 transfer를 한 뒤의 NC membrane이다. 화살표를 보면 marker를 loading했던 부분에서 여러 band가 나타났음을 볼 수 있다. 우리가 사용한 marker는 prestained marker로 이미 단백질에 dye가 붙어있어 염색 없이 색이 바로 보인다. 이 prestained marker가 보이기 때문에 staining을 하지 않고도 transfer가 잘 되었음을 확인할 수 있다. 그림 transfer 뒤의 NC membranemarker가 transfer된 것을 단백질이 모두 transfer된 것으로 볼 수 있기 때문이다.그림 2의 protein detection 결과를 보면 4조가 elution buffer를 이용했을 때를 제외하고는 모두 band가 나오지 않았다. 또한 band가 반드시 나와야할 positive control인 우리 조의ng을 이용할 수 있는데 이 경우 staining solution이 단백질의 R, K나 aromatic ring이 있는 아미노산 잔기들인 Y, W, F, H 등과 결합해 염색해준다. 그래서 marker 뿐만 아니라 gel에 loading한 전체적인 단백질을 볼 수 있고 단백질의 존재 유무로 transfer가 되었는지를 확인할 수 있다. Coomassie staining 과정에서는 staining solution과 prefixing solution을 처리해주어야 한다.그림 1에서 transfer가 잘 되었음을 확인하였지만 그림 2를 보면 우리가 원하는 31kDa size의 Fc protein이 4조에서만 얻어졌음을 볼 수 있다. 우리 조가 실험한 BB와 IPTG(+)는 positive control로 Fc protein이 반드시 존재해야함에도 불구하고 band가 나오지 않았다. 이에 대한 원인으로는 다음과 같은 것들이 있을 수 있다.먼저 IPTG induction시의 오류가 있을 수 있다. IPTG 농도를 잘못 계산해서 너무 적게 처리했거나 incubation 시키는 과정에서 shaking이 잘 이루어지지 않아 induction이 잘 일어나지 못했을 수 있다. induction 단계에서 이상이 생기면 Fc protein 발현 자체가 잘 일어나지 못하므로 band가 나오지 않게 된다.또한 단백질 발현은 되었지만 이후 과정에서 문제가 발생했을 수 있다. 단백질은 열에 의해 denature될 수 있는 물질이다. cell lysis를 할 때 sonication을 하면 많은 열과 free radical이 발생한다. 그래서 얼음에 박아두고 시행하는데 이 때 얼음에 제대로 박지 않았거나 free radical이 너무 많이 발생한 경우 우리가 원하는 Fc protein의 stability가 감소하여 깨져 버렸을 수 있다. 이 경우에도 Fc protein을 얻지 못한다.column purification의 문제도 있을 수 있다. 실험에서 column에 binding buffer.

자연과학| 2013.02.03| 5페이지| 1,500원| 조회(267)

Protein, protein expression, Fc protein

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`문화적 상대주의`를 주제로 한 논설문

과제 : 문화적 상대주의주제 : 제한된 문화적 상대주의를 통해 문화를 발전시켜 나가야 한다.제목 : 모두의 문화가 담긴 발전된 문화1. 서론 - 문제제기가. 서양인이 우리나라의 개고기를 야만적이라며 비판한 일이 있었다.나. 중동 지역에서 여성들의 인권은 무참히 짓밟히고 있다.2. 본론 (正)가. 옹호 논거 1 : 한 문화가 우월하다는 생각은 국가 간의 전쟁과 다툼을 불러일으키게 된다.나. 옹호 논거 2 : 문화는 특정한 집단과 환경에서 생겨난 것이므로 그것을 다른 집단에서 판단하는 것은 옳지 않다.3. 본론 (反)가. 반대 논거 1 : 문화적 상대주의는 인권을 짓밟는 행위를 합리화시킬 위험성을 가지고 있다.나. 반대 논거 2 : 모든 문화를 평등하게 본다면 우열이 존재하지 않으므로 문화적 진보가 불가능하다.4. 본론 (合)가. 인권을 보호하는 범위에서의 제한된 문화적 상대주의가 필요하다.나. 문화의 진보를 위해 올바른 평가 기준이 필요하다.5. 결론제한된 문화적 상대주의의 틀 안에서 서로 다른 문화를 인정하며 장점은 배우고 단점은 개선하여 더 발전적인 문화를 이끌어내야 한다.몇 년 전, 우리나라 음식 중 개고기가 있다는 사실이 유럽에서 논란이 된 적이 있었다. 가족과도 같은 개를 어떻게 먹을 수가 있느냐며 개고기 문화는 야만적이라는 것이다. 우리나라 사람들은 우리나라 고유의 식생활 문화라고 반박했지만, 현재까지도 유럽인들의 비난은 계속되고 있다. 반면 이슬람 문화에서는 여성들의 활동을 제한하는 것이 전통이지만 때로는 이 문화에 의해 강간당한 여성을 살해하는 행동이 정당화되기도 한다.문화적 상대주의를 옹호하는 사람들은 한 문화가 우월하다는 생각 때문에 국가 간의 전쟁이 발생한다고 말한다. 2차 세계대전 때, 독일 나치의 자신들이 가장 우월하고 유대인들은 열등하다는 생각은 유대인의 학살을 가져왔다. 또한 얼마 전 미국이 아프가니스탄에 대항해 전쟁을 일으켰을 때도 미국은 아프가니스탄 여자들을 차도르의 억압에서 해방해 주어야 한다고 주장했다. 하지만 아프가니스탄 여자들에게 차도르는 우아함의 상징이기 때문에 미국이 아프가니스탄을 점령한 이후에도 차도르를 벗으려 하는 여자들은 거의 없었다. 이처럼 다른 문화를 열등한 것으로 보는 관점이 학살과 전쟁을 낳는다는 것이다.옹호론자들의 다른 논거는 문화가 특정한 집단과 환경에서 생겨난 것이므로 그것을 다른 집단에서 판단하는 것이 옳지 않다는 것이다. 그 집단의 문화를 볼 때는 항상 그 사회의 환경과 맥락을 고려해야 한다는 것이다. 한 예로 아메리카 인디언들은 추수가 끝난 후 사람들에게 모든 것을 나누어주는 행사를 가졌다. 유럽인들은 이 행사를 보고는 사치스럽고 낭비적인 행사라며 금지해버렸다. 하지만 인디언들에게는 자신들에게 필요하지 않은 물건을 나누어주고 다른 부족으로부터 필요한 물건을 얻는 유익한 행사였던 것이다.문화적 상대주의에 대해 반대 의견을 가진 사람들은 문화적 상대주의가 인권을 짓밟는 행위를 합리화시킬 수 있다고 주장한다. 일부다처제를 유지하는 어떤 아프리카의 민족은 성년식 때 여자들의 음핵을 자른다. 성감대를 제거함으로써 여자들의 성욕을 없애 일부다처제를 유지하는 것이다. 하지만 이 때 비위생적인 면도칼을 이용하기 때문에 수많은 여자아이가 감염으로 죽는다. 이처럼 자신들의 고유한 문화라는 이름으로 여성들의 생명이 희생되는 것이다.반대자들의 또 다른 논거는 모든 문화를 평등하게 보면 문화 간 우열이 존재하지 않아 진보할 수 없다는 것이다. 문화적 상대주의에서는 모든 문화를 동등하게 존중하며 인정한다. 문화적 상대주의의 관점에서는 좋고 나쁜 것이 없으므로 진보의 기준이 없어 모든 문화가 제자리일 수밖에 없다. 하지만 실제로 문화에 문제점은 존재하기 마련이다. 과거에 존재하던 신분제나 노예제가 그런 것이다. 이런 문화는 이후에 잘못된 것으로 인식되어 폐지되었다. 이처럼 현재 문화에도 여러 문제점이 있을 수 있으며 진보하기 위해서는 우열을 나눌 기준이 필요하다는 것이다.위와 같이 문화적 상대주의의 이름으로 인권이 짓밟히는 경우를 막기 위해서는 인권을 보호하는 범위에서의 제한된 문화적 상대주의가 필요하다. 다른 나라의 문화를 인정하고 존중하되 육체적 고통이 가해지는 경우와 인간의 생명이 달린 경우에는 제한을 둘 필요가 있다는 것이다. 예를 들면 여성이 차도르를 쓰는 것은 문화로 인정하되 강간당한 여자를 돌로 쳐서 죽이는 것은 법으로써 금지해야 한다는 것이다. 또한 아프리카 부족의 문화도 일부다처제는 인정하되 그 문화를 유지하기 위한 수단은 여성을 수술하는 것 외의 다른 방법을 찾아야 한다는 것이다.

인문/어학| 2011.01.16| 2페이지| 1,000원| 조회(647)

문화, 상대주의, 문화적 상대주의

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과학자의 최고 윤리 `가치중립성`

윤리는 사람이 마땅히 행하거나 지켜야 할 도리를 뜻한다. 그렇다면 과학자가 지켜야 할 윤리는 무엇일까? 이 질문에는 ‘생명을 소중히 여겨야 한다.’, ‘연구 과정을 투명하게 밝혀야 한다.’ 등의 다양한 의견이 있을 것이다. 하지만 가장 중요한 과학자의 윤리는 과학의 가치중립성을 지키는 것이다. 과학이라는 학문 그 자체는 과학의 이용이나 적용 범위에 대해 가치판단이나 결정을 내려주지 못한다. 과학은 온전히 가치중립적이며 과학자는 이것을 지켜야 한다. 과학자가 과학의 가치중립성을 지키지 않을 때 그것이 불러올 혼란은 상상할 수 없을 만큼 커질 수 있다.과학적 사실에 대한 결정을 내리는 것은 그것을 이용하는 사람들의 몫이다. 한 임신부가 유전자 검사를 통해 뱃속의 태아가 유전병이 있음을 알았다고 하자. 태아가 유전병이 있다는 사실은 임신부에게 어떠한 판단도 내려주지 못한다. 태아를 낙태할지 낳을지를 결정하는 것은 임신부가 가진 권리이지 과학자가 판단할 사항이 아니다. 과학자에 의해 판단이 내려진다면 관련 지식이 부족한 임신부는 그것을 최선의 방법으로 받아들여 잘못된 결정을 내릴 수 있다. 이는 자신의 권리가 박탈당하는 것이며 내려진 판단에 대해 나중에 두고두고 후회할 수도 있다.과학의 이용 범위를 과학자가 결정하는 경우에는 문제가 발생한다. 이공계 분야를 전공하고 있는 사람들은 누구나 한 번쯤 ‘맨해튼 프로젝트’를 들어보았을 것이다. 2차 세계대전 직전에 아인슈타인은 독일보다 먼저 원자폭탄을 만들자고 주장했다. 이 때문에 원자폭탄 개발계획이 승인되었는데 이것이 바로 ‘맨해튼 프로젝트’이다. 하지만 과학자들이 과학의 가치중립성을 어긴 순간, 그 결과는 파멸에 가까웠다. 히로시마에 떨어진 원자폭탄은 14만 명의 사상자를 내었으며 나가사키에서는 7만 명의 사상자를 내었다. 이것이 끝이 아니었다. 폭탄 투하 당시 직접적인 피해를 받지 않았던 사람들도 방사성 노출 탓에 여러 가지 질병을 앓게 되었다.현대 과학 연구에는 여러 이해관계가 얽매어 있다. 과학 연구를 하는 데는 큰 비용이 들기 때문에 기업이나 국가의 지원이 필수적이다. 연구소가 제약회사의 지원을 받아 회사가 원하는 연구를 해야 하는 상황을 생각해보자. 이 회사는 자신들이 새로 개발한 약품이 매우 효율적이고 부작용이 없다는 결과를 원할 것이다. 하지만 새로 개발된 약품의 효율성이 그다지 높지 않고 부작용을 가져올 수 있다는 결과가 나왔다면 제약회사는 연구 결과를 조작하려 할 것이다. 이러한 시점에서 과학자가 해야 할 일이 바로 과학의 가치중립성을 지켜 결과를 투명하게 발표하는 것이다.

인문/어학| 2011.01.16| 2페이지| 1,000원| 조회(901)

논설문, 과학자, 가치중립성, 과학자의 윤리, 과학자 최고 윤리

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베이컨의 새로운 아틀란티스

Bacon`s ideal of scientific method of research proposed in his New Atlantis>What is Francis Bacon’s utopia? Bacon’s utopia is presented in his book New Atlantis. Bacon’s Atlantis is the country where the science prospers and where the research is systematically developed although some people of our time think that the science is not just blessing to human beings. Bacon emphasized not only the science but also the scientific method. The aim of this essay is to investigateBacon`s ideal of scientific method of research in his book. Moreover, I will show the better scientific method of research by comparing other scientific methods which criticize Bacon’s scientific method.

자연과학| 2011.01.06| 4페이지| 1,500원| 조회(337)

베이컨, 새로운 아틀란티스, Induction, scientific metho..

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