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선택배지와 PCR 평가A+최고예요

실험제목선택배지와 PCR실험목적 및 원리식품 속에 존재하는 병원성 미생물을 선택배지를 사용하여 유해균을 판별한다.기기 및 시약6가지 선택배지(Mannitol Salt agar, Baird-Parker agar, Mannitol egg Yolk Polymyxin agar, Oxford agar, Salmonella-Shigella agar, Eosin Methylene Blue agar) , 오염된 우유 (선택배지를 통해서 어떤 균에 오염됬는지 확인하기 위한 우유)실험방법선택배지1. 검출시험을 이용할 균들을 voltexing한다.2. Staphylococcus areus 균을 알콜 살균을 거친 루프를 이용하여 MSA와 같은 살균과정을 거쳐 Baird-Parker에 도말한다.3. Bacillus cereus 균을 알콜 살균을 거친 루프를 이용하여 MYP Agar에 도말한다.4. Listeria monocytogenes 균을 알콜 살균을 거친 루프를 이용하여 Oxford agar에 도말한다.5. Salmonella 균을 알콜 살균을 거친 루프를 이용하여 SS에 도말한다.6. Escherichia coli 균을 알콜 살균을 거친 루프를 이용하여 EMB Agar에 도말한다.7. 도말한 배지는 37℃에서 24hr를 배양한다.8. 배양 후 형성된 colony를 관찰한다.오염된 우유에 무슨 균이 있는지 확인하는 실험1. 준비된 오염된 우유를 각각의 배지위에 도말한다. 총6개 배지위에 도말한다2. 도말한 배지는 위에 실험한 배지와 같이 incuvator안에 37℃에서 24hr를 배양한다.3. 배양 후 형성된 colony를 관찰한다. 그리고 어디 배지에 균이 자랐는지, 어떤균에 의해서 오염됬는지 확인한다.실험결과MSA배지속 Phenol Red 성분이 pH가 6.8이하라면 노란색, 8.2이상이면 분홍색이 된다. Mannitol분해 여부에 따라 S.aureus 감별을 하였다. 이 미생물이 있으면 노란색 colony를 형성하는 모습을 볼 수 있다.BPA배지는 온도를 충분히 식히지 않고 Egg Yolk Tellurite Emulsion을 첨가하게 되면 익을 수 있으므로 충분히 식힌 후에 첨가하여야 한다. 이번실험에서 도말한 부분이 검회색의 colony형성을 보여준다.MYP배지는 Polymyxin B가 있으며 그람 음성균을 억제하는 역할을 하여 그람양성균을 제외한 균들이 자라지 못하게 하는 기능을 한다. 실험결과에서 보이듯이 밝은 분홍색의 colony를 형성한다.Oxford agar는 L.monocytogenes를 검출 가능하고 aesculin을 분해해서 aglucon에서 유래하는 black iron phenolic compound 형성에 의해 colony주변에 검은색존을 형성하게 된다. 그람음성균의 성장은 완전하게 저해된다. 그람음성균의 저해제로도 쓰인다.Salmonella-Shigella agar 에 salmonella를 도말했는데 Lactose분해능 없어 SS agar에 투명한 colony를 형성하게 된다.EMB배지는 메틸렌블루에 의하여 그람양성구균의 발육은 어느 정도 억제된다. 대장균은 흑색금속광택이 있는 집락이 생긴다. 대장균은 Lactose분해능이 있어 금속광택의 초록색 colony를 형성하는 모습을 보여준다.우유안에 들어있는 병원성미생물검출우리조는 우유가 원래 Oxford agar에서만 검풀이 되어야 되는데 MYP, BPA에도 검출이 되었다. 우유가 어디서 오염이 됬는진 모르겠는데 다른미생물에 의해 2차오염이 되어서 검출이 되었다.Staphylococcus의 2개의 시발체(primer)사이에 낀 DNA부분을 시험관내에서 대량으로 증폭시킨 PCR결과를 보면서 원하고자 하는 특정 유전자를 확인할 수 있었다. 가장 왼쪽에 있는 것이 균 수가 가장 많아 진한 것으로 보여 지고 오른쪽으로 갈수록 연해지는 것을 볼 수 있었다. 균수가 적을수록 유전자도 적고 밴드의 굵기도 얇다. PCR은 타겟 유전자와 균이 일치해야 한다.실험고찰가. 선택배지 & 분별배지선택배지 (selective media)는 특정 미생물의 성장을 돕거나 특정 미생물이외의 미생물의 성장을 억제하는 항생물질, 염, 표면활성제와 같은 성분을 함유하고 있어 특정미생물만 자랄 수 있는 배지이다. 본 실험의 경우 ENB배지를 제외하고 MSA, Baird-Parker agar, MYP, Oxford agar, SS가 선택배지에 해당한다. 분별배지(differential media)는 특정 미생물과 그 이외의 다른 미생물의 콜로니를 구별할 수 있는 배지이다.나. Staphylococcus aureus위장염을 유발하는 포도상구균 식중독의 주요 원인균이다. 우유 육류 등을 포함한 넓은 식품에서 발견이 되고 Entertoxin, hemolysin, coagulase 등 다양한 유해 인자를 생산한다.내열성의 외독소를 생산하여 식중독을 일으키며, 혈액응고효소와 용혈소 등을 분비한다. 선별실험에서 MSA 배지에선 mannitol 발효의 결과로 노란색의 집락을 형성하며 BPA배지에선 egg yolk tellurite의 환원반응으로 검회색의 집락을 형성하며, lecithin의 분해로 집락 주변부의 투명한 clear zone을 형성한다. 황색포도상구균이 Tellurite성분을 환원시켜 검정색의 빛나는 집락을 형성하며 들어가는 난황액을 단백질 분해효소로 분해하여 집락 주변이 불투명한 환을 발생시킨다.다. Bacillus cereus설사와 구토를 일으키는 2가지 독소를 생산한다. 곡류 및 곡류를 이용한 제품에서 쉽게 발생이 된다. 포자를 형성하며 내열성을 지닌다. MYP배지에서 mannitol 발효의 결과로 밝은 분홍색 colony를 형성하게 되고 Polymyxin이 그람음성군 억제제로써 다른 그람음성균들은 이 배지에서 자라지 않게 된다.라. Listeria monocytogenes냉장온도에서 자랄 수 있는 균으로, 이것으로 발병하는 리스테리아증은 상대적으로 낮은 발생빈도를 가지지만, 최대 25% 의 높은 사망률을 가진다. 또한, 낮은 pH와 탈수에 저항력을 가진다. 선별시험에선 Oxford 배지를 사용하며, 검정색의 colony를 형성하게 된다. 이 이유는 Oxford 배지 내의 esculin을 가수분해 하였기 때문이다.마. Salmonella장내세균으로 사람과 동물에 공통으로 병원성을 나타내어, 장티푸스, 급성위장염, 식중독을 일으키는 세균이다. lactose분해능이 없어서 선별시험 시 SS배지에서 투명한 집락을 형성한다. lactose분해가 가능한 대장균은 붉은색의 집락을 형성한다.바. Escherichia coli장내세균으로 분변오염의 검사 지표이다. 5종류로 나뉘며, 그 종류에는 EPEC(장관병원성), ETEC(독소원성), EIEC(장관조직 침입성), EAEC(장관응집성), EHEC(장관출혈성)가 있다. 선별시험시 EMB배지를 사용하며, 금속성의 녹색 광택의 colony를 형성한다. 또한 lactose 분해능이 없는 Salmonella으 경우 투명한 집락을 형성한다.사. PCR의 내용과 culture 법과의 비교PCR은 생물체의 DNA 단편을 인위적으로 대량 증폭시키는 생명공학 기술로 활용되어 왔으며, 최근에는 신속하고 정확한 미생물의 검출기술로도 활용되고 있다. 특히 PCR 기술은 살아 있는 미생물뿐만 아니라 이미 죽은 미생물까지도 검출이 가능하므로 viable cell count 방법으로는 알 수 없는 살균처리 공정 이전의 위생미 생물 오염도까지 측정할 수 있는 장점이 있다. 그러나 PCR 방법이 식중독균을 검출하고 확인하는데 기존의 배지법, 생화학적 분석 및 혈청학적 방법보다 매우 신속하나, 검출된 세균의 정량값을 알 수 없으며 PCR 반응 후 agarose gel electrophoresis하는 과정에서 cross contamination이 일어날 수 있는 등의 한계를 가지고 있고 또한, 자동화가 어려운 문제점을 가지고 있다. PCR 방법은 viable cell count 방법에 비하여 노동력의 감소, 감도와 신속성, 다양한 미생물의 동시검출 등의 측면에서 기술적 우위성을 가지나 미생물 오염의 정량적 분석이 어렵고 기기와 전문성이 요구되는 문제점이 있다. 따라서 PCR 검출법과 viable cell count 방법은 필요에 따라 선택 또는 상호보완 관계를 유지하는 것이 바람직할 것으로 사료된다.

자연과학| 2020.05.24| 5페이지| 1,000원| 조회(307)

Mannitol Egg Yolk Po, Eosin Methylene Blu..

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그람염색법 평가A+최고예요

실험제목그람염색법실험목적 및 원리그람양성균과 그람음성균의 세포벽을 이용하여 염색을 통해 각각의 박테리아를 관찰하며,음양성균과 음성균의 차이점에 대해서 알게 된다.기기 및 시약알코올램프, 피펫, 피펫팁, 룹프, 증류수, side glass, cover glass, crystal violet용액, safranin 용액, 메틸렌블루, gram iodine, decolorizer, 에멀전오일, 광학현미경실험방법그람음성균&양성균1. slide glass에 피펫으로 증류수1방울 떨어트린다.2. 원하는균의 콜로니를 loop으로 취한다.3. loop를 slide glass에 있는 증류수에 충분히 문댄다.4. 알코올램프에서 약간 떨어진 곳에서 slide glass를 움직여 증발시킨 다음 열고정한다.5. crystal violet을 피펫으로 열고정된 균에 떨어뜨려 염색한다. (60초)6. 염색된 균에 직접분사하지 않고, 위쪽에 증류수를 부어 흐르는 물로 씻어낸다.7. gram iodine을 피펫으로 염색된 균 위로 덮어준다(60초). 이역할은 세포벽에 염색제가 잘 붙게하는 역할이 된다. 매염제8. 6번과 같이 씻어준다.9. 탈색제를 이용해서 탈색한다.(40초)10. 6번과 같이 씻어준다.11. safranin으로 염색한다.(60초)12. 6번과 같이 씻어준다.13. cover glass를 덮어 잘 관찰한다.Yeast 염색1. 막걸리에 들어있는 효모를 염색하려고 한다.2. 음성과 양성처럼 열고정을 시킨다3. 염색(1% methylene blue)실험결과-Lactobacillus bulgaricus: 그람양성균으로 최종염색결과 보라색으로 염색된 것을 관찰할 수 있었다. 또 간균으로 긴형태의 모양인 것도 관찰 할 수가 있었다.-Escherichia coli: 그람음성균으로 최종염색결과 적자색으로 염색된 것을 관찰 할 수 있었다.역시 간균이다.그람양성그람음성미생물Lactobacillus bulgaricusEscherichia colicrystal violet보라색으로 염색보라으로 염색gram iodine보라색으로 염색보라색으로 염색acetone변화 없음탈색 됨safranin변화 없음적자색으로 변화현미경관찰효모(막걸리)메틸렌블루변화있음현미경관찰실험고찰가. 그람양성균과 음성균의 차이양성,음성균 모두 세포벽을 가지는데, 세포벽의 화학적 조성은 보통 mucopeptide로 이루어져 있으며, 그람양성균이 그람음성균에 비하여 더 많은 양의 mucopeptide를 함유하고 있다.그람양성균은 mucopeptide 외에도 아미노당류, 단당류, teichoic acid로 구성된 mucopolysaccharide를 함유한다. 그리고 그람음성균의 경우 양성균과 다르게 lipoprotein으로 구성된 외벽을 가지고 있다.세포벽 조상차이에서 양성균과 음성균의 염색 색이 다르다. 세포벽조성 차이에서 비롯됨을 알수가 있다. 그람음성균은 양성균과 다르게 외벽이 존재하는데, 이 외벽을 구성하는 성분 중 인지질이 많아 알코올에 용해가 쉽고 그 때문에 색소가 탈색되기 쉽기 때문인 것을 알수가 있다.나.그람염색법을 하는 이유그람염색법은 다양한 종류의 세균을 동저하거나 분류할 때 가장 많이 사용되는 방법이다. 세균은 그람 염색결과에 따라 두 가지 종류로 나눌 수 있는데, 탈색제(decoloring agent)를 처리한 후에도 crystal violet-iodine complex가 탈색되지 않고 보라색을 나타내는 그람 양성균과 탈색이 되는 그람음성균이 있다.그람염색의 실험결과는 여러 관점으로 설명할 수 있느나, 일반적으로 세포벽의 물리적 특성이 서로 다르므로 염색 결과가 다르게 나타난다. 그 증거로 그람 양성균의 세포벽을 제거한 후 그람염색하면 그람 양성균이라 할지라도 그람 음성균처럼 염색된다. 즉, 펩티도글리칸 자체가 염색되는 것이 아니라 그람 양성균의 두꺼운 펩티도 글리칸 층이 crystal violet으로 세균을 염색한 후 요오드를 넣어 염료가 잘 부탁되도록 한다. 요오드 처리과정을 거친 후 에탄올 탈색 과정이 진행되면 그람 양성균에서는 알코올이 두꺼운 펩티도글리칸을 수축시키며 염표가 빠져나갈 수 잇는 구멍을 차단하여 iodine과 결합된 염료가 탈색 과정에서 본래의 보라색을 유지하게 되는 것이다. 반면 그람 음성균은 펩티도 글리칸 층은 얇으며 중간에 연결된 부분들이 적어 분자 사이에 큰 구멍이 뚫려 있다. 혼합구조물을 알코올로 처리 후 지방을 제거하면 그람 음성균의 세포벽의 구멍은 더 커지게 되어 알코올은 그람음성균에서crystal violet-iodine complex를 쉽게 분리할 수 있다.다. 락토바실루스 균주의 격리 및 확인(논문참조내용)만로고사 샤프(MRS) 한천과 broth(한저우 시약, 중국)는 락토바실루스 균주를 휘젓고 농축하는 데 사용되었다. 이들 유산균 균주와 유사한 전형적인 집락은 선택되어 MRS broth에 접종되었다. 백색 과일 군락과 그람 양성 박테리아는 그람의 얼룩진 분석과 생화학 분석의 측면에서 락토바실러스 균주로 의심되었다. 궁극적으로, 분리현상은 PCR 방식과 16S rDNA 시퀀싱을 이용한 유전자 분석에 의해 확인되고 확인되었다. 락토바실루스 균주의 게놈 DNA(2ml 라토바실루스 배양)는 박테리아의 DNA 분리 키트(FOREGENE, China)를 이용해 추출했다. 16S rDNA 유전자를 증폭시키기 위해 범용 PCR 프라이머 27F(AGAGTTTGATCTGGCTGCTTCAG)와 1492R(TACGGGGCTTTTTACGACTT)을 사용하였다. PCR 프로토콜은 5분 동안 95 °C의 열 사이클 파라미터를 수행한 후 94 °C에서 35 사이클의 변성 주기를 1분 동안, 45초 동안 프라이머 어닐링, 72 °C에서 1분 동안 연장, 72 °C에서 10분 동안 열 지연으로 수행되었다. 또한 PCR 제품은 칭케 생명공학회사(중국 우한)에서 순차적으로 추출하여 NCBI에서 BLAST를 적용받았다. 마침내, 계통발생 트리는 MEGA 6 소프트웨어와 이웃 결합 방법을 사용하여 건설되었다.

자연과학| 2020.05.24| 4페이지| 1,000원| 조회(750)

Escherichia coli, 그람염색법, 그람양성균, 그람음성균, lacto..

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미생물의 성장요인 (D value, Z value, pH, 대기조건)

실험제목미생물의 성장요인 (D value, Z value, pH, 대기조건)실험목적 및 원리미생물의 생장에 영향을 줄 수 있는 요인은 온도, pH, 산소요구성, 수분활성도, 자외선, 방사선, 압력들을 통하여 여러 부분을 통해 조절 가능하다.이번 실험은 D-value를 구한뒤 Z value를 구하고 pH에 따른 균의 활성도와 대기조건을 변경하였을 때 균이 살수있는지 아닌지를 판단할 수 있다.기기 및 시약알코올 램프, Bacillus polyfermenticus, 고체배지, 도말봉, 피펫, HCl, NaOH, 배양box, aneorobe pack, Salmonella, Bacillus실험방법D60, D70값 구하는 실험1. 열처리를 하지 않은 Bacillus polyfermenticus균을 104,105,106으로 희석 후 도말한다.2. 열처리를 10분동안 60도에서 가열한 Bacillus polyfermenticus균을 101,102,103,104,105으로 희석하여 도말한다.3. 열처리를 2분동안 70도에서 가열한 Bacillus polyfermenticus균을 101,102,103,104으로 희석하여 도말한다.4. 도말이 완료된 배지를 clean bench에서 배양 후 CFU를 측정한다.pH에 따른 균의 탁도 실험Salmonella 대조군과 Salmonella의 HCl 0.1 노르말농도를 넣은 것과 NaOH 0.1 노르말농도를 넣은 것을 준비하여 탁도를 보아 그 차이를 비교한다.공기조성에 따른 균의 반응성 실험Bacillus균을 배양box에 넣는데 aneorobe pack이랑 같이 넣은 후 배양후 관찰한다.실험결과열처리를 하지 않은 Bacillus polyfermenticus균열처리를 10분동안 60도에서 가열한 Bacillus polyfermenticus균열처리를 2분동안 70도에서 가열한 Bacillus polyfermenticus균Salmonella 대조군과 A: HCl 0.1 노르말농도, B: NaOH 0.1 노르말농도Bacillus균을 배양box ? aneorobe packD-value현재 온도에서 미생물의 수를 1/10로 감소하기 위한 시간이다.D = t/Log(N0/Nt)t=가열시간, N0=초기 균수, Nt=가열 후 시간Z-valueD-value를 1/10로 감소하기 위한 온도 상승량Z = (T1-T2)/Log(D1/D2)T1-T2:온도 상승량 D1:온도 상승 전 D-value D2:온도 상승 후 D-value초기균수(N0) : 31 X 105 cfu/ml60도 가열한 균수(N60) : 41 X 103 cfu/ml70도 가열한 균수(N70) : 52 X 103 cfu/mlD60:t/Log(N0/N60) = 10/Log(31X105cfu/ml/41X103cfu/ml) = 5.32D70:t/Log(N0/N70) = 2/Log(31X105cfu/ml/52X103cfu/ml) = 1.13Z값 : (T70-T60)/Log(D60/D70) = (70-60)/Log(5.32/1.13) = 14.83온도초기 균수에서 신뢰가능한 범위인 104에서 15개의 콜로니가 측정되었다.60도에서 10분 가열된 배지에서 신뢰가능한 범위인 102에서 22개의 콜로니가 측정되었다.70도 2분 가열된 배지에서 전체적으로 균수가 0~1개가 나왔고 전부 사멸한 것으로 보았다.pHpH 2 와 pH 13은 기본 대조군의 비해 눈으로 보일정도로 균이 자라지 않았다는 것을 확인할 수 있다. 대부분의 미생물이 pH 5~9에서 최적 성장을 보인다고 알고 있는 것과 같이 결과가 눈에 띄게 보임을 알 수 있다.대기조건anaerobe pack이 box내부의 산소를 포집하여 O2농도를 낮추고 CO2농도를 높여주었는데 Bacillus 같은 경우는 호기성 균으로,실험고찰Discussion이번 실험이 좋은 결과를 가져오지는 못했다. 그 이유는 희석할 때의 여러 작은 문제들이 있었고 그로 인해 실험 결과는 좋지 못했다. 60도 가열한 살균에 경우 너무나도 많은 콜로니가 나왔고 희석해도 양이 점점 많이 줄지 못했고 신뢰 가능한 결과값을 가질 수 없었다. 하지만 70도의 결과와 60도 결과 추정치를 보아 온도가 미생물의 활동을 급격히 감소시킨다는 것을 알 수 있었다.이는 온도 말고 pH와 다른 허들을 이용하여 미생물로부터 안전하게 만들 수 있다. 이것은 이전에 방법에서 더욱 저장성이 높은 식품의 탄생에 일조 할 수 있다. 최근에는 식품 보존 방법이 식품 내 미생물의 행동에 미치는 영향(향상성), 대사, 반응 등을 감안하여 multitarget 식품 보존이라는 개념이 등장 했다. 이 모든 과정과 연구는 결국 식품의 저장성을 높이기 위한 것으로 보인다.가. 온도에 따른 미생물의 사멸습열은 핵산, 단백질, 효소의 변성을 초래한다. 식물 세포 사멸의 주요기작은 핵산의 파괴인데, 포자에서는 발아가 가정 열에 민감한 부분이다. 약한 열처리 시 세포막이 주로 손상을 받게 된다. 건열은 습열보다 덜 치명적이며, 주로 탈수와 산화에 의해 사멸을 나타낸다. 즉, 습열살균과 비교시 건열살균은 더 높은 온도와 더 긴 시간을 요구한다. 일정온도에서 가열에 의한 미생물 집단의 사멸속도는 로그값으로 나타내는데, 일정온도, 일정시간 살균은 초기 미생물 수와 관계없이 일정한 살균효과를 나타낸다. 이를 그래프로 나타낼 시, 열처리 시간과 생존 미생물의 관계는 Log10의 직선그래프를 나타낼 수 있다.이그래프에 따라 생존 미생물의 수를 90% 감소시키는 데 필요한 시간을 D값(decimal raduction value)으로 정의한다. 즉, 미생물 집단의 90%(1로그 값)를 파괴하는데 소요되는 시간이다. 또한, 가열온도에 따른 Log D값의 그래프는 가열치사곡선을 나타낸다. 이에서 알 수 있듯이, D값은 특정온도에서 미생물의 내열성을 나타낸다. 고로 가열치사곡선으로 다양한 온도에서 미생물의 내열성의 변화를 보여주고, 각각의 시간-온도조합에 따른 사멸율을 계산할 수 있게 한다.나. D값에 영향을 주는 요인특정온도에서 미생물의 내열성을 나타내는 D값은 미생물의 종류에 따라 다르며, pH, 수분활성도 등 다양한 요인에 의하여 달라진다. 같은 종의 미생물이라도 균주에 따라, 포자냐, 영양세포냐에 따라 다르다. 포자는 일반적으로 영양세포보다 훨씬 내열성이 강하다. 이처럼 D값은 세포의 나이, 성장상태, 성장온도, 성장배지조성, 이전의 열처리 유무에 따라 달라지므로, 하나의 조건에서 얻어진 값들을 다른 조건에 사용하는 것은 많은 주의가 필요하다.다. 미생물의 내열성과 Z값미생물이 열에 의하여 사멸되는 속도는 가열온도에 따라 변하며, 온도가 높을수록 빨라질 것이란 점을 예견할 수 있다. 따라서 정의되는 D값은 살균온도가 증가할수록 작아질 것이다. 여러 온도에서 D값을 실험적으로 측정하여 logD를 T에 대하여 그리면 직선이 된다. D값이 1/10 또는 10배 정도로 변할 때 이에 대응하는 온도차를 z값(z value)이라고 한다. D값이 1 대수주기(logarithmic cycle) 변할 때의 온도차이다. z값은 미생물의 열에 의한 사멸속도의 온도의존성을 나타내는 것으로 z값이 적은 미생물은 사멸속도의 온도의존성이 높으며, z값이 큰 미생물은 사멸 속도에 미치는 온도의 영향이 적다. 따라서 z값이 클수록 온도상승에 대한 살균효과의 증가율이 적다고 할 수 있다.라. pH미생물의 생육, 대사능력 및 화학적 활성 등은 pH에 의하여 큰 영향을 받는다. 일반적으로 식품 중 과일은 pH가 낮고, 채소류, 육류는 pH가 높다. 미생물은 그 생육에 최고, 최저, 최적 pH가 있는데 , 식품은 대부분은 산성이나 중성이므로 식품과 관련지으면 최적 또는 최저 pH가 중요하다. 곰팡이와 효모는 pH2~8.5의 넓은 범위에서 생육이 가능하나 대체로 약 산성을 좋아하며, 최적 pH는 4~6이다. 반면, 대부분의 세균과 방선균은 중성부근에서 약알칼리성, 즉 pH 7~7.5에서 잘 발육하고, 일반 부패균은 pH5.5이하에서는 거의 생육을 못하며 식중독균은 더욱 예민하여 C.botulinum의 경우 pH가 4.6 미만이면 극히 예외를 제외하고는 생장과 독소 생산이 불가능하다.마. 대기조건산소와 관련하여 미생물은 4군으로 분류되는데, 편성(절대)호기성균, 통성혐기성균, 편성혐기성균, 미호기성균 으로 분류된다.편성호기성의 경우 유리산소가 있어야만 생육을 할 수 있는 균이다.통성혐기성의 경우 유리산소의 유무와 관계없이 생육을 할 수 있는 균으로, 산화적 대사와 혐기적 대사를 모두 할 수 있는 균이다.편성혐기성균의 경우 유리산소가 존재하면 생육을 못하고 이는 대사에 의해 생성된 H2O2가 유해작용을 하고, 산화환원전위가 상승하여 생육을 불가능하게 한다.

자연과학| 2020.05.24| 6페이지| 1,000원| 조회(706)

pH, D value, Z value, 대기조건, 미생물의 성장요인

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