1) 실험 과정① 원심분리기 사용 이유본 실험에서 원심분리기를 사용하여 TiO2 를 분리하였다. 실험 과정 중에 TiO2 를 분산시키기 위하여 지속적으로 마그네틱 스터러로 분산시켜준다. 이로 인해 TiO2 가 침전되지 않고 분산되어 있다. 따라서 Methylene blue 에 흡착된 TiO2 가 광촉매 반응의 활성정도를 판단하는데 장애를 줄수 있다. 이를 방지하기 위해 원심분리기를 이용하여 TiO2 를 분리하여 순수한 MB 용액을 얻어 흡광도를 측정하여 정확한 결과를 얻어 낸 것이다.② 흡광도 663nm 사용 이유<그래프6>을 보면 MB의 흡광도가 650~700nm 사이에서 제일 높게 측정되는 것을 확인할 수 있다. peak값은 663nm로 이때의 파장 값을 이용하여 결과를 측정함으로써 정확한 데이터 값을 얻어 낼 수 있다.2) 실험 결과① 흡광도 변화Methylene blue 는 광촉매인 TiO2 와 광분해가 일어나고 생성된 수소 이온과 결합하여 환원하게 되면 색이 푸른색에서 무색으로 변하게 된다. <표 1>을 보면 시간이 증가함에 따라 흡광도가 감소하는 것을 확인할 수 있다. 또한 <표 2>를 통해 시간이 지남에 따라 반응이 진행되며 물질의 농도가 줄어드는 것을 통해 광분해 반응이 진행된 것을 알 수 있다.② 반응 차수 예측<표 5>는 반응 차수를 가정하여 그린 그래프의 추세선을 통해 반응 속도 상수와 R2 의 값을 구한것을 정리한 것이다. 먼저 R 2 을 비교하면 1 차가 가장 1 에 가까운 값을 지녔다. 이 반응은 Methylene blue 가 분해
(1) 실험 과정 고찰① 물질의 희석 방법실험에서 각 용매에 대한 PMMA 가 3g/dL 의 무게농도로 제작되어 있고, 이를 1g/dL 과 2g/dL 로 희석하였다. 3g/dL 의 용액을 1g/dL 의 경우 3g/dL 의 용액과 용매를 1:2 로 희석하여 제조하고 2g/dL 의 경우 3g/dL 의 용액과 용매를 2:1 로 희석하여 제조한다. Ubbelohde 점도계에 용액 12mL 를 넣어 점도를 측정하게 되므로 15mL 기준으로 희석하여 실험을 진행하였다. ② Ubbelohde 점도계를 아세톤으로 세척하는 이유고분자용액으로 점도를 측정한 후 증류수와 아세톤을 이용하여 세척하게 된다. 이는 점도계 내부에 남아있는 고분자를 제거하여 정확한 실험값을 얻기 위한 것이다. 아세톤은 극성 및 유기용매로써 고분자와 같은 유기물이나 이물질을 녹여 점도계를 세척하고 건조기를 이용하여 휘발성이 강한 아세톤을 제거하여 깨끗한 점도계를 이용해 실험을 진행하기 위한 것이다. (2) 실험 결과 고찰① 용매의 종류에 따른 측정 시간 변화와 무게 농도에 따른 하강 시간 변화 이유<표 1>부터 <표 4>까지의 결과 값들을 비교하면 PMMA 의 무게 농도가 증가함에 따라 고분자 용액의 하강시간이 증가하는 것을 확인할 수 있다. 용액 내 분자들의 상호작용이 증가하면 용액의 점도가 증가하게 되고, Ubbelohde 점도계 내에서의 고분자 용액 하강 속도가 감소하게 된다. 따라서 측정되는 시간이 증가한다. 용매의 종류에 따라 하강하는 시간이 다른 것도 확인할 수 있는데 이는 물질마다 점도가 다르기 때문이다<표 6>을 보면 용매마다 점도가 다름을 확인할 수 있고, Acetonpehnone 의 경우 평균 측정시간
1) 실험 과정 고찰(1) DW 의 하강 시간 측정 이유본 실험에서 Ubbelohde 점도계를 이용하여 하강시간을 측정하였고, <표 1>을 통해 고분자 용액의 점도가 농도에 따라 변화하는 것을 알 수 있다. 이때, 고분자의 하강시간만이 아니라 순수한 DW 의 하강시간도 측정하였는데, 이는 증가한 점도의 기준을 설정하기 위해 진행한 것으로 순수한 DW 를 이용함으로써 정확한 기준을 새우기 위한 것이다. (2) 항온조 실험 이유점도는 온도의 영향을 받는다. 액체의 경우 온도가 증가함에 따라 점도가 감소하게 되므로 온도는 중요한 파라미터이다. 따라서 온도를 일정하게 유지해주기 위해 항온조를 25 도로 설정하여 두어 실험을 진행한 것이다. 2) 실험 결과 고찰(1) 환원점도 그래프가 일직선이 아닌 이유<그래프 1>을 보면 그래프가 일직선이 아니고, R2=0.4618 로 신뢰도가 낮다. 결과 값이 오차가 농도가 증가함에 따라 점진적으로 하강 시간이 증가해야 하지만 급격하게 증가했다가 감소했다가 증가하는 모습을 보인다. 이에 대한 원인을 다음과 같이 판단하였다. ① 일정하지 않은 온도항온조를 이용하여 온도를 일정하게 유지하기 위해 노력하였지만 동일한 온도에서 실험이 진행되지 않을 가능성이 있다.
활성산소와 항산화의 원리를 이해하고 DPPH 법을 통해 L-ascorbic, Tocopheol 과 Galic acid 의 농도별 라디칼 소거 활성능을 실험적으로 확인하였다.(1) 실험 과정 고찰1) control 사용 이유본 실험에서 항산화 물질을 넣지 않은 물질의 흡광도를 측정하여 라디칼 소거 활성능을 계산하였다. 이 control 은 대조군이라고도 하며, 실험군과의 결과 비교를 위해 아무런 조건을 설정하지 않은 집단이다. 대조군과 실험군과의 흡광도 차이를 이용하여 항산화제의 농도에 따른 흡광도 변화와 라디칼 소거 활성능을 계산할 수 있다.2) 연속 희석본 실험에서 항산화제를 희석할 때 연속 희석법을 사용하여 희석을 진행하였다. 연속 희석을 통해 각 항산화제의 농도를 200, 100, 50, 25, 12.5, 6.25μM 를 0.5mL 를 제작하였다. 200μM 1mL 를 제작한후 0.5mL 를 취한 후 증류수나 에탄올 0.5mL 를 이용해 희석한 후 이를 반복하여 용액의 농도를 1/2 로 희석하였다. 이를 통해 용액에 들어가는 시료의 양을 계산하는 과정과 취하는 과정을 줄일 수 있다는 장점이 있다. 3) 517nm 파장 사용 이유위 사진을 보면 DPPH 는 보라색 DPPH-H 는 노란색 곡선을 보이는 것을 확인할 수 있다 .517nm 에서 DPPH 는 잘 관찰되는 반면 DPPH-H 는 거의 측정되지 않으므로 517nm 에서 흡광도를 측정한다.
1) 결과 분석(1) 1 차, 2 차 전기영동 실패 원인<사진 1>과 <사진 2>를 비교해보면 결과 2 에 해당하는 <사진 2>에서는 밴드가 형성된 것을 확인할 수 있지만 maker 와 제한효소의 종류를 확인할 수 있는 밴드를 관찰할 수 없음을 알 수있다. 흑백으로 변환한 <사진 7>을 보면 밴드가 형성되었지만 비교할만한 결과를 얻을 수 없었다.먼저 Sample 제조 중 문제가 발생하였을 수 있다. 실험 과정에서 Sample 을 제조한 후 Micro tube 에 넣어 37℃에서 1 시간 반응시켰다. 이때, 반응을 진행하기전 볼텍싱을 통해 용액을 혼합하고 반응을 시켰다. 하지만 충분히 혼합되지 않고, 반응시간이 충분하지 않아 절단이 이루어지지 않아 밴드를 확인할 수 없을 것이라고 판단하였다. 또한 본 실험에서 사용하는 용액들의 양은 μl 단위로 적은 양을 사용하고, 절단 효소의 양은 다른 용액의 양에 비해 적은 양을 사용한다. 따라서 용액을 혼합하는 과정에서 절단 효소가 외부로 유출되어 제조한 샘플에 없을 가능성이 있다.다음으로는 Agarose gel 의 Wall Size 에서 문제가 발생하였을 수 있다. Comb 의 사이즈가 큰 부분과 작은 부분이 있다. 여기서 작은 부분을 사용하였어야 하지만 큰 부분을 사용하여 실험을 진행하여 문제가 발생하였을 수 있다. 따라서 2 차에서는 loading 양을 2 배로 늘려 진행하였으나 결과가 동일하게 나왔지만 비교적 1 차에 비해 밴드의 모양을 확인할 수 있다.전기영동 과정에서 문제가 발생하였을 수 있다. 1 차 실험를 진행할 때, 전기영동을 진행하던 중간에 Agarose gel 이 떠있는 것을 확인할 수 있었다.